Table of Contents Table of Contents
Previous Page  34 / 60 Next Page
Information
Show Menu
Previous Page 34 / 60 Next Page
Page Background

В

иноделие

и

иноградарство

5/2011

32

виноградарство

Особенности клонального

микроразмножения

сорта

Крестовский

Н. П. Дорошенко

, д-р с.‑х. наук;

А. С. Куприкова

, аспирант

Всероссийский научно-исследовательский институт виноградарства и виноделия им. Я. И. Потапенко

использованием ценных абориген-

ных сортов винограда связана воз-

можность производства высокока-

чественных и уникальных вин, прославив-

ших виноградарство и виноделие Дона [1].

Неоспорима их значимость в селекционном

процессе [2], так как местные сорта поми-

мо высокого качества урожая обладают

ценными агробиологическими свойствами.

На Дону сформирована группа столовых и

универсальных сортов— естественных гиб­

ридов столовых восточных и аборигенных

донских сортов. Один из них —малоизвест-

ный донской универсальный сорт позднего

срока созревания

Крестовский

, встречаю-

щийся в виде единичных кустов на старых

донских виноградниках. Его урожай исполь-

зуют для потребления в свежем виде и при-

готовления ординарных столовых вин. Сорт

отличается высокой силой роста, хорошим

вызреванием лоз. Следует отметить, что в

коллекции института остался единственный

куст с признаками короткоузлия, заражен-

ный бактериальным раком.

Цель работы

— оздоровить растения

сорта

Крестовский

в культуре тканей и орга-

нов при помощи культуры апикальных мери-

стем и хемотерапии для получения растений,

свободных от хронических заболеваний, со-

хранения растений в коллекции

in vitro

и на

базисном маточнике.

Для проведения хемотерапии использова-

ли салициловую кислоту, которую некоторые

авторы относят к новому классу фитогормо-

нов. Она способна поддерживать целостность

мембранных структур клеток при воздействии

стрессовых факторов [3]. Доказано [4], что в

ее присутствии происходит ингибирование

распространения вируса ВТМ, одной из при-

чин которого является снижение проводимо-

сти плазмодесм и межклеточного транспорта

вируса.

М.Т. Упадышев, А.Д. Петрова

[5, 6] в

процессе хемотерапии выявили антивирус-

ную активность салициловой кислоты в отно-

шении вирусов различной природы у ягодных

и плодовых культур.

По данным наших исследований [7], до-

бавление салициловой кислоты в состав пи-

тательной среды на этапе ввода в культуру

in vitro

подвоев винограда способствует луч-

шей приживаемости меристем, новообразо-

ванию узлов и побегов на этапе собственно

микроразмножения.

Непосредственное отношение к культи-

вированию растений

in vitro

имеет проб­

лема контаминации. Питательные среды

служат отличным субстратом для развития

бактериальной и грибной микрофлоры, что

приводит к гибели большого количества рас-

тений, ухудшению их ризогенеза, снижению

ростовых показателей и качественных ха-

С

рактеристик.

Для деконтаминации исполь-

зуют антимикоплазменные антибиотики

,

в частности

цефотаксим

, который также

стимулирует морфогенетический процесс и

увеличивает частоту регенерации растений,

что сокращает период культивирования тка-

ней

in vitro

[8].

На основании вышеизложенного сали-

циловую кислоту и цефотаксим включили в

программу исследований.

Методика.

Все исследования проводили

по общепринятым в биотехнологии методи-

кам на питательной среде Мурасиге и Скуга,

модифицированной для каждого этапа мик­

роразмножения.

Вводили в культуру на твердой питатель-

ной среде Мурасиге и Скуга 17 июля. На

каждый вариант выделяли 28 меристем.

Цефотаксим растворяли в стерильной во-

де и добавляли в проавтоклавированную

и охлажденную до 45 °С питательную среду

непосредственно перед выделением мери-

стем. На этапе микрочеренкования концент­

рацию антибиотика в среде варьировали от

250 до 550 мл/л.

УДК 634.83:581.143.316

Ключевые слова:

аборигенный сорт

Крестовский, меристемы, питательная

среда, регенерация, приживаемость,

оздоровление

Препарат, мг/л

Число меристем

Гибель Отсутствие

развития

Мелкие

до 1 мм

Средние

1–3 мм

Крупные

более

3 мм

С развер-

тыванием

листьев

Высаженные

Через 20 сут после изолирования

Контроль

1

— 8

4

15

— 15

Салициловая кислота (1,4) — 11

5

9

3

— 3

Цефотаксим (200)

1

5

2

6

14

— 14

Через 30 сут после изолирования

Контроль

1

— 2

3

— 7

7

Салициловая кислота (1,4)

1

— 7

4

4

9

9

Цефотаксим (200)

4

— 4

1

— 5

5

Таблица 1

Препарат, мг/л

Приживаемость

меристем, %

Число срезанных в пассаже побегов

1

2

3

4

5

Всего

Контроль

92,9

11

11

1

1

15

39

Салициловая кислота (1,4)

82,1

1

3

3

1

0

8

Цефотаксим (200)

70,6

16

23

0

7

8

54

Таблица 2

Препарат, мг/л

Продолжи-

тельность

этапа, сут

Число пассажей

Число срезанных побегов

всего продуктивные всего

на

меристему

на пассаж

всего продуктивные

Контроль

112

5

5

39

1,4

7,8

7,8

Салициловая кислота (1,4)

112

5

4

8

0,3

1,6

2,0

Цефотаксим (200)

112

5

4

54

1,9

10,8

13,5

Таблица 3

Препарат, мг/л

Число листьев

Листья, %

Корни, %

нормальные шиповатые нормальные

тонкие

Контроль

11,9

100,0

70,0

30,0

Салициловая кислота (1,4)

22,5

50,0

50,0

100,0

0

Цефотаксим (200)

10,8

70,0

30,0

80,0

20,0

Всего по опыту

15,1

40,0

60,0

80,0

20,0

Таблица 4

Электронная Научная СельскоХозяйственная Библиотека