Table of Contents Table of Contents
Previous Page  44 / 52 Next Page
Information
Show Menu
Previous Page 44 / 52 Next Page
Page Background

ТЕХНОЛОГИИ ЗАГОТОВКИ, ХРАНЕНИЯ И ИСПОЛЬЗОВАНИЯ КОРМОВ

ͪКормопроизводствоͫ № 3, 2016

www.kormoproizvodstvo.ru

42

Методика исследований.

Количество микотоксинов:

афлатоксина М1 (АФЛАМ1), афлатоксинов (АФЛА), охраток-

сина А (ОТА), Т-2 токсина (Т-2), зеараленона (ЗЕН), дезоксини-

валенола (ДОН), — в образцах травостоя, силоса и молока

определяли иммуноферментным методом (ИФА), используя

тест-системы

AgraQuant

TM

(

Romer Labs, Inc

., Австрия) согласно

рекомендациям производителя. Микотоксины, за исключе-

нием ДОН, экстрагировали из проб 70% метанолом, ДОН —

дистиллированной водой. Оптическую плотность (

OD

) из-

меряли при λ = 450 нм с использованием микрострипового

фотометра

Stat Fax

303+ (

Awareness

Technology, Inc.

, США), со-

поставляя показатели для образца и для стандартов.

Научно-хозяйственный опыт по скармливанию кормовой

добавки «Заслон» проводили в ЗАО ПЗ «Большевик» на 20 ко-

ровах 2 и 3-й текущей лактации. Группы-аналоги отбирались

по продуктивности, живой массе, срокам отёла, количеству

лактаций. Препарат «Заслон» вводили в рацион, смешивая

его с комбикормом из расчёта 20 г на 1 голову в сутки. Про-

должительность эксперимента составляла 124 дня.

Содержание белка в молоке определяли колориметри-

ческим методом (ГОСТ 23327-98), жира — кислотным мето-

дом (ГОСТ 5867-90).

Отбор проб крови проводили утром до начала кормле-

ния (натощак), анализ проводили по стандартным методи-

кам (Кондрахин, 1969). Так, содержание общего белка опре-

деляли биуретовым методом, глюкозы — ферментативным

глюкозоксидазным методом, кальция и фосфора — на ав-

томатическом биохимическом анализаторе

KOBAS INTEGRА

400, мочевины — кинетическим методом (

UV

-тестом).

Пробы содержимого рубца для изучения состава ми-

кробного сообщества отбирали зондом.

Состав микробного сообщества рубца коров исследо-

вали методом анализа

T-RFLP

. Тотальную ДНК из образцов

выделяли с помощью набора

Genomic DNA Purification Kit

(

Fermentas, Inc.

, Литва) согласно рекомендациям производи-

теля. ДНК-амплификацию проводили с использованием ДНК-

амплификатора

Verity

(

Life Technologies, Inc.

, США) с помощью

эубактериальных праймеров 63F (

CAGGCCTAACACATGCAAGTC

)

с меткой на 5’-конце (флуорофор

WellRed

D4

) и 1492

R

(

TACGGHTACCTTGTTACGACTT

).

Флуоресцентно меченые ампликоны гена 16

S рРНК

очи-

щали по стандартной методике. Рестрикцию ампликонов 16

S

рРНК

(30–50 нг) проводили рестриктазами

HaeIII

,

HhaI

и

MspI

,

следуя рекомендации изготовителя (

Fermentas

). Продукты

рестрикции анализировали с помощью

CEQ

8000 (

Beckman

Coulter

, США) согласно рекомендациям производителя. По-

грешность прибора

CEQ

8000 составляла не более 5%.

Принадлежность бактерий к определённой филогенети-

ческой группе определяли с помощью программы

Fragment

Sorter

(http://www.oardc.ohiostate.edu/trflpfragsort/index.php

).

Математическую и статистическую обработки резуль-

татов проводили с использованием программного обе-

спечения

Microsoft Excel

2010. Использовались методы мно-

жественного корреляционного и дисперсионного анализа

(Лакин, 1990).

Результаты исследований

. В 2013–2015 годах специ-

алисты ООО «БИОТРОФ» провели обширный мониторинг со-

держания микотоксинов в кормовом травостое и силосе из

животноводческих хозяйств Российской Федерации. Было

исследовано 68 проб кормового травостоя из 11 животно-

водческих хозяйств Ленинградской области и 215 проб сило-

са — из 20 животноводческих хозяйств Ленинградской, Мо-

сковской, Ярославской, Кировской, Воронежской, Липецкой

областей, республик Мордовия, Саха-Якутия, Краснодарско-

го края и др. с использованием метода иммуноферментного

анализа (ИФА).

На рисунке 1 приведены средние данные по РФ о содер-

жании отдельных микотоксинов во всех исследованных про-

бах силоса в сравнении с уровнями ПДК (Ветеринарно-сани-

тарные требования Таможенного союза, 2010).

Выяснилось, что проблема загрязнения силоса микоток-

синами стоит намного острее, чем проблема контаминации

зерна и комбикормов. Практически во всём исследованном

отечественном силосе были превышены уровни предельно

допустимых количеств микотоксинов.

На рисунке 1 приведена карта распространения мико-

токсинов в силосе из животноводческих хозяйств различ-

ных регионов Российской Федерации, которая представ-

ляет собой обобщённые данные исследований компании

«БИОТРОФ». Как было отмечено выше, микотоксины в кор-

Рис. 1. Среднее содержание микотоксинов в силосе

из траншей и кормовом травостое (мг/кг)

0

0,1

0,2

АФЛА

ОТА

Т-2

ЗЕН

Содержание ЗЕН, Т-2,

ОТА и АФЛА

0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

Травостой Силос

ПДК

Содержание ДОН

Травостой Силос

ПДК

Рис. 1. Карта распространения микотоксинов в силосе

из животноводческих хозяйств различных регионов

Российской Федерации:

— суммарная токсичность от 8 до 10 ПДК;

— суммарная

токсичность от 11 до 15 ПДК;

— суммарная токсичность от

16 до 20 ПДК;

— суммарная токсичность 21 и более ПДК;

— территория, не охваченная исследованиями;

1 — Северо-Западный ФО; 2 — Центральный ФО (кроме Цент-

рально-Чернозёмного региона); 3 — Центрально-Черно-

зёмный регион; 4 — Республика Мордовия; 5 — Южный ФО;

6 — Республика Якутия

Э

лек

тр нная Научная СельскоХозяйственная Библиотека