

СОСТОЯНИЕ ВСЕМИРНЫХ ГЕНЕТИЧЕСКИХ РЕСУРСОВ ЖИВОТНЫХ
В СФЕРЕ ПРОДОВОЛЬСТВИЯ И СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА
РАЗДЕЛ
4
362
Адаптация и устойчивость к заболеваниям – комп-
лексные неморфологические признаки, их нелегко
измерить. Их можно исследовать в экспериментах,
в которых животные подвергаются специфическим
средовым воздействиям или инфицируются соответ-
ствующими агентами. Однако такие эксперименты
трудоемки и дорогостоящи и поднимают вопросы о
защите животных. Именно поэтому чрезвычайный
интерес исследователей вызывает идентификация
генов, контролирующих сложные признаки. Для
выявления таких генов используются разные под-
ходы. Созданные инструменты для выявления функ-
циональной изменчивости описаны в главе 3.3.
Краткий обзор
молекулярных методов
3
В этом разделе описаны наиболее важные современ-
ные молекулярные методы, разработанные для оце-
нок генетического разнообразия и выявления функ-
циональных вариантов. Во вставке 73 описывается,
как ДНК и РНК экстрагируются из биологического
материала и подготавливаются для анализа. Харак-
теристики чаще всего используемых молекулярных
маркеров приведены во вставке 74, и составление
выборок (очень важный аспект молекулярных ис-
следований) обсуждается во вставке 75.
Полиморфизм белков был первым поколением
маркеров, используемых для генетических иссле-
дований домашних животных. Однако количество
полиморфных локусов, доступных для анализа, и
уровень их наблюдаемого полиморфизма часто низ-
ки, что сильно ограничивает их применение в иссле-
дованиях генетического разнообразия. Благодаря
развитию новых технологий, полиморфизмы ДНК
стали предпочтительными маркерами в исследова-
ниях генетической изменчивости с использованием
молекулярных методов (вставка 74).
3.1 Методы, использующие
ДНК-маркеры для оценки
генетического разнообразия
Маркеры ядерной ДНК
В настоящее время для определения полимор-
физма ядерной ДНК в распоряжении имеется ряд
Вставка 73
Экстракция и наработка ДНК и РНК
Первый шаг в анализе ДНК, РНК и белка – их вы-
деление из биологического образца и очистка. Для
этого имеется целый ряд протоколов и готовых реак-
ционных смесей (китов). Применяемая стратегия
определяется источником материала и выделяемыми
молекулами. Например, экстракция ДНК из цельной
крови или лейкоцитов относительно легка, в то время
как ее экстракция из обработанных пищевых продук-
тов много труднее. Экстракция РНК из поджелудочной
железы очень трудна из-за высокой скорости процес-
сов посмертной деградации в этом органе. Очистка
ДНК, РНК и белков является ключевым фактором, от
которого зависит надежность конечного результата.
После выделения ДНК (или РНК) из клеток, следую-
щим шагом является получение тысяч или миллионов
копий определенного гена или участка ДНК. Фрагмент
ДНК может быть размножен в микроорганизмах, обыч-
но
E. coli
, или
in vitro
с использованием полимеразной
цепной реакции (ПЦР). Этим методом, принесшим
Нобелевскую Премию его создателю, Кэри Мюллису,
экспотенциально умножают (амплифицируют) лю-
бой сегмент ДНК с известной последовательностью.
Ключевым компонентом в ПЦР является ДНК-полимера-
за, выделенная из
Thermus aquaticus,
микроорганизма,
адаптированного к жизни и размножению при очень
высоких температурах. Эта термостабильная
Taq
-
полимераза (по названию
Thermus aquaticus
) обеспе-
чивает репликацию цепей ДНК в циклическом режиме
и приводит к геометрическому росту количества копий
ДНК – мишени амплификации. Цикл ПЦР включает три
этапа: i) денатурация ДНК при 90–95˚C для разделения
молекулы ДНК на две одноцепочечные последова-
тельности, которые служат матрицами; ii) отжиг пар
коротких одноцепочечных олигонуклеотидов (праймеров,
или затравок), комплементарных к областям – мишеням,
фланкирующим амплифицируемый фрагмент (фрагмент
интереса), при 45–65˚C; iii) удлинение вновь синтезируе-
мых цепочек ДНК, начиная от праймеров, осуществляе-
мое Taq-полимеразой при 72˚. Этот цикл повторяется,
обычно 25-45 раз, позволяя накапливать достаточное
количество ампликонов (фрагмент гена или ДНК, синте-
зируемый с использованием ПЦР) для анализа.