ризуются различной степенью гомологии. Использование праймеров с не
высокой степенью гомологии (90 % и менее) может существенно понижать
чувствительность и специфичность ПЦР-анализа и приводить к появлению
ложноположительных и ложноотрицательных результатов [1].
Теми же причинами, по-видимому, можно объяснить несовпадение
результатов сравнительного анализа ИФА и ПЦР-диагностики ВЛКРС, про
веденного на большом экспериментальном материале Р. Kubis et al. (1996).
Однако, в ПЦР нами были довыявлены 5 коров-вирусоносителей, кото
рых ни РИД, ни ИФА не выявили.
На рисунке представлена электрофореграмма продуктов ПЦР-анализа.
Рисунке Электрофореграмма продуктов ПЦР в 1,5 % -м агарозном геле:
1-отрицательный контроль; 2-положительный контроль; 3,4-ПЦР(+)пробы;
5-маркер ЬрЮО; 6-8-ПЦР(-)пробы
Заключение. Многочисленные данные, свидетельствующие о преиму
ществах ПЦР в сравнении с серологическими методами (более раннее вы
явление вируса, чем антител против антигенов ВЛ КРС в РИД и ИФА на 1-8
недель (7), выявление животных в случае скрытого вирусоносительства), а
также, данные полученные нами, характеризуют ПЦР как эффективный ме
тод диагностики ЛКРС, однако существующие проблемы материально-тех
нического характера еще долго будут препятствовать внедрению ПЦР в ве
теринарную практику с целью диагностики лейкоза. Напротив, ИФА заре
комендовал себя как высокоэффективный альтернативный или дополняю
щий РИД серологический метод, который можно, на наш взгляд, успешно
использовать для диагностики лейкоза уже сегодня. Особенно в хозяйствах
на завершающих этапах оздоровления от лейкоза и в хозяйствах, где регист
рируются еденичные случаи инфекции ВЛКРС.
308
Научная электронная библиотека ЦНСХБ