Table of Contents Table of Contents
Previous Page  43 / 92 Next Page
Information
Show Menu
Previous Page 43 / 92 Next Page
Page Background

41

ПИЩЕВАЯ ПРОМЫШЛЕННОСТЬ

7/2013

QUALITY AND SAFETY

Содержание редуцирующих саха&

ров, образующихся в результате

ферментативной реакции, определя&

ют колориметрическим методом, ос&

нованным на взаимодействии саха&

ров с реактивом Шомоди–Нельсона.

В результате этой реакции образует&

ся соединение голубого или бирюзо&

вого цвета, интенсивность окраски

которого пропорциональна содер&

жанию редуцирующих сахаров,

образовавшихся в процессе фер&

ментативной реакции. Интенсив&

ность окраски полученных раство&

ров измеряют на фотоэлектроко&

лориметре или спектрофотометре

при длине световой волны 610 нм;

активность выражается в едини&

цах целлюлазной способности

ед. ЦлС/г или см

3

анализируемого

препарата.

ГОСТы определения амилолити&

ческой, протеолитической и пекто&

литической активностей были разра&

ботаны взамен старых, союзных

ГОСТов 20264.2–89, 20264.2–88,

20264.3–81. Включенные в ГОСТы Р

новые методы ориентированы на

высокоактивные ферментные препа&

раты для пищевой промышленности,

и изменения касались в основном

разработки современных способов,

стабилизирующих процессы биока&

тализа субстрата, а также подготовки

ферментных препаратов к анализу.

ГОСТ Р 54330–2011. Методы опре&

деления

амилолитической актив

ности

был введен взамен ГОСТа

20264.4–89. ГОСТ отражает изложе&

ние методов определения амилоли&

тической и глюкоамилазной актив&

ности [2]. За основу взят старый ме&

тод, но изменения касаются введе&

ния в ГОСТ современных аналити&

ческих приборов, а также способа

подготовки ферментных препаратов

для анализа и реактивов (увеличена

в 2 раза концентрация соляной кис&

лоты при приготовлении раствора

йода). Разработаны условия для оп&

ределения активности термоста&

бильных

β

&амилаз. В связи с тем, что

современные высокоактивные пре&

параты обладают повышенной ста&

бильностью для приготовления кон&

трольных образцов, время темпера&

турной инактивации ферментов уве&

личено в 6 раз, т.е. до 1 ч. Сокраще&

ны расходы субстрата и раствора

ферментных препаратов на проведе&

ние анализа в 5 раз.

Метод определения амилолити&

ческой активности основан на коли&

чественном определении прогидро&

лизованного крахмала в результате

его гидролиза ферментами амило&

литического комплекса до декстри&

нов различной молекулярной массы

в стандартных условиях (температу&

ра 30 °С, значение рН 6,0 – для бак&

териальных и 4,7 – для грибных

β

&амилаз, продолжительность гид&

ролиза 10 мин).

За единицу амилолитической ак&

тивности (АС) принято такое количе&

ство фермента, которое при опреде&

ленных значениях рН (6,0 – для бак&

териальных и 4,7 – для грибных

β

&амилаз) и температуре 30 °С за 1

мин катализирует гидролиз 1 г крах&

мала до декстринов различной мо&

лекулярной массы, что составляет

30 % крахмала, введенного в реак&

цию. Активность выражается в еди&

ницах АС/г или кубических санти&

метрах анализируемого ферментно&

го препарата.

Количество прогидролизованного

крахмала определяется колоримет&

рическим методом по степени окрас&

ки остаточного крахмала раствором

йода.

Метод определения

глюкоами

лазной активности

основан на ко&

личественном определении глюко&

зы, образующейся при гидролизе

крахмала глюкоамилазой в стандар&

тных условиях (температура 30 °С,

значение рН 4,7, продолжительность

гидролиза 10 мин).

Глюкоамилазная активность (ГлС)

характеризует способность фермент&

ного препарата катализировать рас&

щепление растворимого крахмала

до глюкозы.

За единицу глюкоамилазной ак&

тивности принято такое количество

фермента, которое способно катали&

зировать гидролиз растворимого

крахмала при температуре 30°С и

значении рН 4,7, высвобождая за

1 мин 1 мкмоль глюкозы. Активность

выражается в единицах ГлС/г или

кубических сантиметрах анализиру&

емого ферментного препарата.

При проведении цветной реакции

количество глюкозы, образующейся

в результате ферментативного гид&

ролиза крахмала, определяют глю&

козооксидазным методом, основан&

ным на действии ферментов глюко&

зооксидазы и пероксидазы. Фермент

глюкозооксидаза катализирует окис&

ление

β

&D&глюкозы кислородом воз&

духа до глюконовой кислоты с обра&

зованием перекиси водорода. Оба

конечных продукта образуются в ко&

личествах, эквимолярных окислен&

ной глюкозе. Перекись водорода

под действием фермента пероксида&

зы окисляет ферроцианид калия (ка&

лий железистосинеродистый), кото&

рый переходит в феррицианид ка&

лия, окрашенный в лимонно&желтый

цвет, интенсивность окраски которо&

го пропорциональна количеству

глюкозы. Интенсивность окраски ра&

створов замеряют на фотоэлектроко&

Электронная Научная СельскоХозяйственная Библиотека