ЭлБиб

XI Съезд Русского ботанического общества

Полученные результаты позволили сделать заключение, что этилен является фактором роста и развития

мужского гаметофита, участвуя в межклеточных взаимодействиях в системах пыльник-пыльца и пыльца - пестик.

Работа поддержана грантом РФФИ (03-04-48451).

ЛИТЕРАТУРА

Linskens

Я.

Incompatibility reactions during the flowering period of several Petunia clones // Acta Bot Neerl., 1977. - Vol.

26.-P.411-415.

Herrero

Dickinson H.G.

Pollen tube growth following compatible and incompatible intraspecific pollinations in Petunia

hybrida/ / Planta, 1980.-Vol. 148. -P . 217-221.

Ковалева Л. В

. Белковый фактор несовместимости в пестиках петунии // Доклады Академии Наук СССР, 1983. - Т.

272. - С. 1017-1020

К.

Singh A., Coleman С.Е, loerger T.R., Kheyr-Pour А., Као T-h.

Self-incompatibility in Petunia inflata: isolation and

characterization of cDNAs encoding three S-allele-associated proteins. - Sex Plant Reprod., 1990. - Vol. 3. - P. 130-138.

Ковалева Л. В., Ракитин В

Ю., Добровольская А.А.

Гаметофитно-слорофитные взаимодействия в системе пыльца-

пестик. II Выделение этилена и С02 при опылении

Физиология растений, 2000. -Т . 47, N 4. - С. 544 -547.

ОЦЕНКА ВОЗМОЖНОСТИ ПОДДЕРЖАНИЯ ГАМЕТОФИТНЫХ МУТАНТОВ ТАБАКА В КОЛЛЕКЦИИ

ПУТЕМ КЛОНАЛЬНОГО МИКРОРАЗМНОЖЕНИЯ

Еналеева Н. X., Лобанова Л. П.

Саратовский государственный университет им. Н.Г. Чернышевского, г. Саратов

Создание генетической коллекции гаметофитных мутантов - форм с наследственно закрепленными

изменениями в структурной организации мужского и/или женского гамстофитов является необходимым условием

выявления закономерностей генетической регуляции развитая мега- и микрогамегофитов и изучения функциональной

роли их элементов. Опыт получения гаметофитных мутаций

Nicotiana tabacum

в отделе генетики Ботанического

сада СГУ на основе рентгеновского облучения, экспериментальной гаплоидии, внутри- и межвидового скрещиваний

(Enaleeva, 1992, 2001), показал, что в большинстве случаев индуцированные мутации, хотя и передаются в ряду

поколений, однако, из-за сложного характера наследования их фенотипическое проявление у потомства существенно

варьирует. Изменениям подвержены экспрессивность и цитологический тип мутаций. Кроме того, возможны

ситуации, когда вследствие стерильности мутантов половое воспроизведение оказывается невозможным.

Один из принципиальных подходов к решению проблемы сохранения исходного цитологического типа

гаметофитных мутаций заключается в вегетативном размножении мутантных форм с помощью культуры

соматических тканей. Данный метод заключается в получении клеточной культуры из соматических тканей

мутанта и ее поддержания в виде каллуса. Поскольку табак обладает высокой регенерационной способностью,

получение в требуемый момент растений из каллуса не является сложной проблемой.

Возможность поддержания коллекции мегагаметофитных мутантов путем культивирования соматических

тканей с последующей регенерацией растений продемонстрирована на примере четырех форм, различающихся

происхождением и цитологическим проявлением мутантных признаков мегагаметофита. Растение №15 из М3

БР—141/4 с общей частотой аномальных зародышевых мешков 68%, из которых 59% составляют клеточные

зародышевые мешки с уменьшенным числом элементов. Растение №27/4 из М3 СГ-164/29 с общей частотой

аномальных зародышевых мешков 54%, из которых 31% составляют клеточные зародышевые мешки с

уменьшенным числом элементов и 21% - клеточные зародышевые мешки с увеличенным числом элементов.

Растение №38/3 из М3 СГ-164/29 с общей частотой аномалий 86%, из которых 76% составляют малоядерные

ценоцитные зародышевые мешки с нетипичными ядрами. Растение №9 из F2 гаплоида АГ2-141 с общей

частотой аномальных зародышевых мешков 85%, из которых 52% составляют малоядерные ценоцитные.

В качестве эксплантов использовали листовые диски мутантных растений. После стерилизации их

помещали на питательную среду МС, дополненную витаминами, сахарозой, ИУК (0,1 мг/л) и кинетином (0,25

мг/л). Образовавшиеся регенеранты пересаживали на среду для укоренения с 0,5 мг/л ИУК. Укорененные

растения высаживали сначала в сосуды, затем на экспериментальный участок. В период массового цветения

завязи распустившихся предварительно кастрированных цветков фиксировали и с помощью метода

ферментативной мацерации (Еналеева и др., 1972) проводили цитологический анализ зародышевых мешков.

Для каждого растения исследовали выборку 100 зародышевых мешков.

Установлено, что общий уровень аномальных зародышевых мешков у 14 регенерантов с генотипом

растения №15 из М3 БГ—141/4 варьирует в диапазоне от 55 до 78%. Некоторые вариации наблюдаются и по

соотношению разных типов в спектрах отдельных растений, хотя во всех случаях доминирующим оставался

140

Электронная Научная СельскоХозяйственная Библиотека