Table of Contents Table of Contents
Previous Page  514 / 592 Next Page
Information
Show Menu
Previous Page 514 / 592 Next Page
Page Background

К О Л Л Е КЦ И И КУ Л Ь Т У Р К Л Е ТО К И ТКА Н Е Й Р АС ТЕН ИЙ ; М Е Т О Д Ы СО Х Р А Н Е НИ Я

_________________________________________ ГЕ Н О Ф О Н Д А _________________________________________

СОВМЕСТНОЕПРИМЕНЕНИЕМАННИТА И АБКПРИПОДГОТОВКЕК

КРИОСОХРАНЕНИЮКЛЕТОЧНЫХШТАММОВ РАСТЕНИЙ

IN VITRO

БаскаковаО.Ю., Никишина (Корнеева) Т.В., Зоринянц С.Э., Попов А.С,

АдуеваС.М., КуликоваЛ.Н., ЖивухинаЕ.А.

Институт физиологиирастений им.К.А.Тимирязева РАН

,

Москва

,

Московский

Педагогический Государственный Университет им.В.И.Ленина.

Для криосохранения большинства длительно поддерживаемых

in

vitro

клеточных штаммов приходится разрабатывать способы

предварительного культивирования. Штаммы Rhs-2 и Rhs-8

Rhaponticum

carthamoides

(маралий корень, продуценты экдистероидов) в отличие

от ранее успешно криосохраненного Rhs-1 (Л.А.Волкова, А.С.Попов),

для которого достаточно было защиты одним диметилсульфоксидом

(ДМСО, 7%) и подготовка была не нужна, оказались не только менее

криоустойчивыми, но и чувствительными к ДМСО. Из 45 испытанных

криозащитных растворов наилучшей была смесь 2% ДМСО + 5%

трегалозы + 4% глицерина. Для предварительного культивирования

комбинировали в течение 7 дней одновременно 6% маннит и

АБ К , 7,5x10 -5 М. Сочетание такой подготовкй и криозащиты при

замораживании по нашей стандартной программе обеспечило

выживаемость до 44% и успешное возобновление роста штаммов Rhs-

2 и Rhs-8 после оттаивания из жидкого азота. В то же время при

предкультивировании только с маннитом без АБК выживаемость была

ниже, а совсем без подготовки - вдвое ниже и возобновить рост не

удавалось.

Однако для штамма клеток сахарной свеклы САС-2n такое же

предкультивирование оказалось безуспешным. Безуспешным было

также холодовое закаливание с повышением концентрации сахарозы в

среде и синхронизация культуры по митозам, хотя в последнем случае

был достигнут достаточно высокий уровень синхронизации и суспензия

была обогащена мелкими маловакуолизированными клетками.

Замораживание было проведено сразу после пика митозов, в фазу G1.

На этом же штамме после указанной комбинированной подготовки

применили сверхбыстрое замораживание с использованием

витрифицирующего раствора японских авторов (PVS-3). Однако,

несмотря на витрификацию раствора, выживаемость не превышала 15-

17%, в то время как при программном замораживании получали 20-

30%, но возобновления роста не достигли. Следовательно, для клеток

САС-2n, как и ранее для штаммов Ж-2 и ДМ-0,5 (Д.Н.Федоровский)

сверхбыстрое замораживание не обеспечило преимуществ по

сравнению с программным.

5 1 5

Научная элек ронная библиотека ЦНСХБ