ЭлБиб

45 / 52

МЕХАНИЗАЦИЯ, АВТОМАТИЗАЦИЯ И ИНФОРМАЦИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ
ͪКормопроизводствоͫ № 3, 2018
43
рабочей камере 2, сырьё попадает в зону транспортирова-
ния, где происходит измельчение масличного сырья, спрес-
совывание и отжим масла.
Из зоны транспортирования сафлоровое сырьё попа-
дает в зону непосредственного извлечения масла. Здесь
происходит значительное уплотнение сырья, давление воз-
растает и начинается интенсивное извлечение сафлорового
масла.
За счёт возможности регулирования зазора между пла-
стинами можно отрегулировать работу пресса под широ-
кий диапазон масличных культур, а также снизить попада-
ние мезги в отжатое масло (Василенко, 2016).
Глубина извлечения масла регулируется при помощи
обоймы 9 с конусной втулкой 10, позволяющей изменять
толщину жмыха на выходе. Максимально отрегулированная
толщина жмыха позволяет исключить повторное прессова-
ние (экспеллирование) (рис. 1а).
Для получения сафлорового жмыха в виде гранул обой-
ма 9 выставляется таким образом, чтобы зазор между втул-
кой и матрицей стремился к нулю, и при этом извлекают
винт из втулки 10 (рис. 1б ).
В полученном сафлоровом жмыхе исследовали содер-
жание влаги, сырого протеина, а также аминокислотный
состав, характеризующий качество готового продукта для
кормления сельскохозяйственных животных (Мустафаев,
2016; Матеев, 2017).
Содержание влаги в сафлоровом жмыхе составило 7,4%.
Для определения содержания белка использовалось сле-
дующее оборудование: установка для разложения белка
Turbotherm (Gerhardt), установка для перегонки аммиака
Vapodest (Gerhardt). В результате исследований установле-
но, что массовая доля сырого протеина в сафлоровом жмы-
хе составила 19,9%.
При изучении аминокислотного состава использован
жидкостный хроматограф Shimadzu LC — 20 Prominence.
Определение аминокислотного состава осуществлялось
методом ионообменной хроматографии с постколоночной
дериватизацией нингидридом (без триптофана), определе-
ние триптофана — методом ионообменной дериватизации
нингидрином.
Ионообменная хроматография относится к жидкост-
но-твёрдофазной хроматографии, в которой подвижной
фазой является элюент (жидкость), а неподвижной фа-
зой — ионообменник (твёрдое тело). В основе метода ио-
нообменной хроматографии лежит процесс замещения
ионов, связанных с неподвижной фазой, ионами элюента,
поступающими в колонку. Разделение происходит благо-
даря разному сродству ионов, находящихся в смеси, к ио-
нообменнику, что приводит к различным скоростям их
перемещения по колонке. Ионная хроматография вклю-
чает все высокоэффективные жидкостные хроматографи-
ческие разделения ионов в колонках, объединённые с не-
посредственным детектированием в проточном детекторе
и количественной обработкой полученных аналитических
сигналов.
В результате исследований установлено, что в состав
белка сафлорового жмыха входит 18 аминокислот (табл. 1,
рис. 2). Массовая доля этих аминокислот приведена
в табл. 1. Пищевая ценность растительных белков опреде-
ляется их усвояемостью и содержанием незаменимых ами-
нокислот.
Как видно из табл. 1, из восемнадцати представленных
в сафлоровом жмыхе аминокислот девять являются незаме-
нимыми. Массовая доля незаменимых аминокислот в саф-
лоровом жмыхе составила 5,66%, в частности лизина содер-
жится 82,15 нмоль/мл, метионина — 45,10 нмоль/мл.
По строению бокового радикала выделяют аминокис-
лоты алифатические, ароматические, серосодержащие, со-
держащие ОН-группу, дополнительную СООН-группу и до-
полнительную NH2-группу. Распределение аминокислот,
содержащихся в жмыхе, по строению бокового радикала
представлено на рис. 3.
Были проведены производственные испытания по
скармливанию сафлорового жмыха крупному рогатому
скоту. Крупный рогатый скот контрольной группы получал
хозяйственный рацион, а опытной — рацион, обогащён-
ный сафлоровым жмыхом, (состав корма был рассчитан
1. Содержание аминокислот в сафлоровом жмыхе
Обозна-
чение
Название
аминокислоты
С,
нмоль/мл
Массовая
доля, %
ASP +
ASN
Аспаргиновая кислота +
аспаргин 387,97 1,64
THR Треонин 140,17 0,53
ALA Аланин 258,46 0,73
VAL Валин 203,71 0,76
SER Серин 228,99 0,76
GLU +
GLN
Глутаминовая кислота +
глутамин 659,56 3,07
GLY Глицин 386,72 0,92
LEU Лейцин 253,81 1,05
CYS Цистеин 15,11 0,12
MET Метионин 45,10 0,21
ILEU Изолейцин 134,43 0,56
TYR Тирозин 72,58 0,42
PHE Фенилаланин 138,74 0,74
HYS Гистидин 88,99 0,43
LYS Лизин 82,15 0,38
ARG Аргинин 239,20 1,32
PRO Пролин 184,86 0,67
TRP Триптофан 20,66 0,11
Рис. 2. Хроматограмма незаменимых кислот
в сафлоровом жмыхе
Электронная Научн я СельскоХозяйственная Библиотека