Table of Contents Table of Contents
Previous Page  127 / 306 Next Page
Information
Show Menu
Previous Page 127 / 306 Next Page
Page Background

Нами были использованы несколько

типов маркеров SCAR - маркеры (сик-

венсспецифические), позволяющие опре­

делить наличие или отсутствие локуса у

исследуемого сорта, RAPD-маркеры, ис­

пользование которых позволяет выявить

полиморфизм в структуре ДНК конкрет­

ных геномов и соответственно составлять

их паспорта.

Однако в некоторых случаях работа с

SCAR-маркерами усложняется наличием

нескольких близких по нуклеотидному

составу аллелей, иногда различающихся

всего по 2 нуклеотидам. В данном случае

стандартный электрофорез в агарозном

геле не дает желаемого результата. В та­

ком случае предлагается использовать по­

лиакриламидные гели. RAPD-маркеры

позволяют использовать стандартный

электрофорез в более плотных гелях и

показывают более достоверный резуль­

тат. Однако, как в первом случае, так и во

втором, для каждого маркера необходимо

проводить подбор условий проведения

ПЦР-реакции. Как экспериментально бы­

ло показано на практике температура от­

жига праймера, которую выдает олиго­

калькулятор зачастую оказывается зани­

женной, и в результате мы имеем слиш­

ком много не полиморфных фрагментов в

геле, которые к тому же плохо разделя­

ются. Нами выявлено, что повышение

температуры отжига увеличивает инфор­

мативность и объективность такого ана­

лиза. Это в свою очередь доказывает воз­

можность более эффективного использо­

вания данной технологии в наших усло­

виях. Необходимо отметить, что в на­

стоящее время существуют новые техно­

логии, позволяющие проводить анализ с

точностью практически в 100% как по

наличию определенных локусов, так и

полиморфизма ДНК. Таких результатов

можно добиваться, используя специаль­

ные приборы типа биоанализатора

Agilent 2100, секвенаторов и т.д. Эти осо­

бенности

молекулярно-генетического

маркирования будут учтены в последую­

щей оценке разных видов признаковой

коллекции люпина БГУ.

На данном этапе в наших исследова­

ниях предусматривались следующие за­

дачи:

1) отработка методов молекулярно-ге­

нетического маркирования применитель­

но к культуре люпина;

2) идентификация отдельных образ­

цов люпина узколистного и белого по от­

дельным маркерам ДНК для установле­

ния наличия их в геномах изучаемых об­

разцов.

Материалы для исследования были

взяты из коллекции люпина сектора гене­

тики растений НИЛ молекулярной гене­

тики и биотехнологии Белорусского госу­

дарственного университета. Молекуляр­

ные исследования проводили согласно

методическим указаниям [1].

Для выделения ДНК использовали

трех-, четырехдневные проростки люпи­

на. Выделение и очистку ДНК исследуе­

мых образцов проводили по методике

фирмы Fermentas, набором Genomic DNA

Purification Kit, разработанным этой же

фирмой. Пробы разводили бидистилиро-

ванной водой и хранили при -20° С. Кон­

центрацию полученного раствора ДНК

определяли методом спектрофотометрии

на приборе CARY 50 SCAN (Varian, Ав­

стралия). Для проведения PCR использо­

вали амплификатор Thermo Hybaid Rx2

(Великобритания). Применяли ферменты и

реактивы фирмы «Fermentas» (Литва).

Используемые ISSR-праймеры были син­

тезированы фирмой «Primetech» (Минск).

В работе использовали праймеры [ука­

занные в литературе 2]:

AnManMl

(свя­

зан с Rcl -геном, определяющим устой­

чивость люпина к антракнозу),

Pauper

Ml

(связан с alc-геном, контролирующим

алкалоидность люпина),

LeMl

(связан с

1е-геном, уменьшающим растрескивае-

мость бобов),

МоА

(связан с mollis-

геном,

контролирующим

твердока­

менность семян люпина),

KuHMl

(связан

с Ku-геном, уменьшающим потребность в

яровизации).

Продукты ПЦР разделяли методом

электрофореза в 2% агарозном геле с бу­

фером ТАЕ в присутствии бромистого

-

117

-

Научная электронная библиот ка ЦНСХБ