Table of Contents Table of Contents
Previous Page  234 / 318 Next Page
Information
Show Menu
Previous Page 234 / 318 Next Page
Page Background

ПРОБЛЕМЫ СОХРАНЕНИЯ БИОРАЗНООБРАЗИЯ РАСТЕНИЙ

EX SITU И IN SITU И БОТАНИЧЕСКИХ КОЛЛЕКЦИЙ

223

биотехнологические подходы оздоровления коллекционного фонда пред­

ставляется весьма актуальным.

Одним из эффективных методов размножения и оздоровления расте­

ний, в том числе и суккулентов, является микроклональное размножение in

vitro [

1

, 3, 4, 5]. Размножение in vitro предпочтительно для редких и плохо

размножаемых растений, а также единично полученных мутантов и гибрид­

ных экземпляров. Такой подход не только перспективен для сохранения

исчезающих видов, но и позволяет быстро размножить растительный мате­

риал и оздоровить растение [1, 3,4, 7]. Кроме того, in vitro культивируемые

растения могут беспрепятственно обменивать между странами согласно

международным санитарным нормам, что имеетбольшое значение для пополне­

ния коллекции ботанического сада [3]. Оптимизация условий культивирования

и акклиматизации при высадке в грунт необходима для каждого вида [

1

].

Интересным и перспективным подходом для использования в ботани­

ческих садах является метод длительного хранения in vitro культур в усло­

виях замедленного роста. Депонирование коллекции редких видов какту­

сов может стать доступным и экономичным способом долговременного хра­

нения коллекции генотипов. Это имеет значение как в мировом масштабе

для сохранения генетического разнообразия растений так и для получения

безвирусных сортов растений.

Исходным материалом для размножения in vitro кактусов являются

апикальные и латеральные части стебля, ареолы, туберкулы. В зависимости

от целей работы используют различные части растения: для освобождения

от вирусных инфекций — апексы побегов размером

0

,

1

-

0 ,2

мм; а в целях

массового размножения —экспланты до 1 см. Проращивание семян в

стерильных условиях применяется для решения ряда прикладных вопросов:

семенного размножения растений с мелкими семенами, преодолевание пе­

риода покоя трудно и длительно прорастающих семян, выращивание расте­

ний из недозрелых и недоразвитых семян, введение в культуру растений

редких экземпляров сохраняя целостность взрослого растения [7].

• Эксперименты по вычленению тканей, посеву семян проводили сте­

рильных условиях в ламинарных боксах оборудованных бактерицидными

лампами. [

2

,7]. При культивировании экспланты хранили в световой ком­

нате при температуре 24,5 ‘С, освещенности —3000 лк с 16-часовым свето­

вым периодом.

Сведения, касающиеся влияния стерилизующих соединений на жизне­

способность эксплантов кактусов, разноречивы [1, 3, 4, 5, 7], и в этой

связи нами были проведены экспериментальные исследования, по опреде­

лению оптимальных условий стерилизации для эксплантов вида

Auslrocilindropuntia subulata

и семян

Eriocereusjusbertii

в условиях Централь­

ного ботанического сада НАНБ. В качестве стерилизующих средств иссле­

довали действие

0

,

1

%-ного раствора диацида,

10

% и

2 0

%-ных растворов

гипохлорида кальция, 10% и 20%-ных растворов гипохлорида натрия, 3% и

15%-ных растворов перекиси водорода в сочетании с обработкой материала

80%-ным этанолом. Всего было исследовано 15 вариантов стерилизации

для апикальных и латеральных эксплантов кладодиев

Austrocilindropuntia

subulata

и 10 вариантов для семян

Eriocereus jusbertii.

Экспериментальные

Данные приведены в таблицах 1 и 2.

Электронная Научная Сельск Хозяйственная Биб иотека