

Материалы Международной научной конференции 23-25 сентября 2014 г.
спектрометр Shimadzu GCMS-QP2010Ultra (Япония). Для поиска белого
фосфора спектры 31Р ЯМР снимались с экстрактов ОСВ в органическом
растворителе (диэтиловый эфир), для поиска метаболитов - с отфильтро
ванной водной фазы ОСВ.
Микробиологический посев из субстрата с исходным содержанием бе
лого фосфора 0,1% производился после окончания анаэробной переработ
ки. Посевы «газоном» производили под плотную питательную среду МПА
в чашке Петри. Посев из субстратов с исходным содержанием Р4 0,01%
проводился на крахмало-аммиачный и мясо-пептонный агар.
Результаты исследований
При содержании белого фосфора в субстрате 0,1% по массе наблюда
лось необратимое угнетение жизнедеятельности микрофлоры по сравне
нию с контролем, выражающееся в снижении выделения газообразных
продуктов жизнедеятельности. Тем не менее, даже при такой концентрации
токсичного вещества не наблюдалась полная гибель микроорганизмов
(Миндубаев, 2013 а). При содержании Р4в иле 0.01% по массе наблюдалось
значительное угнетение, вплоть до полного прекращения выделения газа.
После периода угнетения, жизнедеятельность микрофлоры начинала вос
станавливаться. Из субстратов с концентрацией Р4 0,01% первая проба для
31Р ЯМР анализа была взята на 35 день. Спектры продемонстрировали на
личие одного сигнала, соответствующего белому фосфору. Значит, срок в
35 дней недостаточен для переработки Р4 ОСВ. Вторая проба была отобра
на на 63 день. Спектр показал отсутствие сигналов фосфорных соединений,
в том числе Р4. Таким образом, срок продолжительностью 63 суток оказал
ся достаточным для переработки белого фосфора в концентрации 0,01%.
Следует отметить, что на поверхности субстратов с добавлением Р4
0,01% наблюдался рост колоний микроорганизмов. В контрольных образ
цах без белого фосфора рост микроорганизмов не наблюдался. Выделенные
микроорганизмы идентифицировали как представителей рода
Streptomyces.
При одинаковом разведении из опытного субстрата с содержанием белого
фосфора 0,1%, на МПА выросло больше колоний бактерий, чем из кон
трольного. Плотность клеточной суспензии в контроле составляла 2,5 х
ю 8
клеток/мл субстрата, а в опыте - 1,5 х Ю10клеток/мл субстрата, т.е. на два
порядка больше. Выращенные бактерии были идентифицированы как
представители рода
Bacillus
(Миндубаев, 2014). Итак, во всех случаях мы
наблюдаем сходное явление - отсутствие или ослабление роста микроорга
низмов в контрольных субстратах после прекращения выделения газа. Ве
роятно, это различие вызвано тем, что охарактеризованные микроорганиз
190
Научная электронная библиотека ЦНСХБ