ЭлБиб

14 / 86

13
Аграрная наука Евро-Северо-Востока, №6(61), 2017 г.
Выводы. Сдвиги в работе генетических
систем адаптивности, аттракции и микрорас-
пределения продуктов фотосинтеза внутри ко-
лоса качественно и количественно различаются
при воздействии ионов алюминия на корневые
системы и надземные органы. Совпадение вли-
яния алюминия на работу генетической систе-
мы микрораспределения пластических веществ
(стимулирующий эффект) при обоих способах
поступления в растение отмечено только у од-
ного из изученных сортов ‒ Эстивум 155.
В условиях кислых почв повысилась эф-
фективность работы генетических систем: ми-
крораспределения пластических веществ у со-
ртов Алтайская 80, Карабалыкская 98, Легенда,
Линия 3691h, Эстивум 155 и AC Taber; адаптив-
ности и аттракции – у сортов Алтайская 80, Ле-
генда, Тулайковская 105, Тюменская 80, Эстивум
155 и Nawra. Данные сорта могут быть привле-
чены в селекционную работу в качестве источ-
ников усиления работы указанных генетических
систем при выращивании на кислых почвах.
Внекорневая обработка растений сортов
Баженка, Легенда, Сибирская 14 и Эстивум 155
солью алюминия приводит к усилению актив-
ности генетической системы микрораспределе-
ния продуктов фотосинтеза и повышению доли
хозяйственно ценной части колоса при выра-
щивании на нейтральной почве.
Список литературы
1. Малецкий С.И., Роик Н.В., Драгавцев В.А.
Третья изменчивость, типы наследственности и
воспроизводства семян у растений // Сельскохозяй-
ственная биология. 2013. № 5. С. 3-29. doi: 10.15389/
agrobiology.2013.5.3rus.
2. Драгавцев В.А., Драгавцева Е.В. Механиз-
мы сдвигов доминирования количественных при-
знаков яровой пшеницы в разных географических
точках // Генетика. 2011. Т. 47. № 5. С. 691-696.
3. Якушев В.П., Михайленко И.М., Дра-
гавцев В.А. Агротехнологические и селекционные
резервы повышения урожаев зерновых культур в
России // Сельскохозяйственная биология. 2015.
Т. 50. № 5. С. 550-560. doi: 10.15389/agrobiolo-
gy.2015.5.550rus.
4. Lisitsyn E.M., Shchennikova I.N., Shupletso-
va O.N. Cultivation of barley on acid sod-podzolic soils
of north-east of Europe // Barley: Production, Cultiva-
tion and Uses. New York: Nova Publ. 2011. Р. 49-92.
5. Tomioka R., Takenaka C., Maeshima M., Te-
zuka T., Kojima M., Sakakibara H. Stimulation of root
growth induced by aluminum in Quercus serrata Thunb
is related to activity of nitrate reductase and maintenance
of IAA concentration in roots // Am. J. Plant Sci. 2012.
Vol. 3. pp. 1619-1624. doi:10.4236/ajps.2012.311196.
6. Щенникова И.Н., Кокина Л.П., Лисицын Е.М.
Изменение пигментного комплекса флаговых ли-
стьев ячменя под действием эдафического стресса
// Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2010. №
1(16). С. 24-28.
7. Kopittke P.M., Moore K.L., Lombi E., Gi-
anoncelli A., Ferguson B.J., Blamey P., Menzies N.,
Nicholson T., McKenna B., Wang P., Gresshoff P.M.,
Kourousias G., Webb R., Green K., Tollenaere A. Iden-
tification of the primary lesion of toxic aluminum in
plant roots // Plant Physiol. 2015. V. 167. P. 1402-1411.
doi: 10.1104/pp.114.253229
8. Wang W., Zhao X.Q., Chen R.F., Dong X.Y.,
Lan P., Ma J.F., Shen R.F. Altered cell wall properties
are responsible for ammonium-reduced aluminum accu-
mulation in rice roots // Plant Cell Environ. 2014. V. 38.
P. 1382-1390. doi: 10.1111/pce.12490
9. Nunes-Nesi A., Brito D.S., Inostroza-Blanche-
teau C., Fernie A.R., Araújo W.L. The complex role of
mitochondrial metabolism in plant aluminum resistance
// Trends in Plant Science. 2014. V. 19(6). P. 399-407.
doi:
10. Ma J.F., Shen R., Nagao S., Tanimoto E. Alu-
minum targets elongating cells by reducing cell wall ex-
tensibility in wheat roots // Plant and Cell Physiology.
2004. V. 45. P. 583-589.
pch060
11. Azmat R., Hasan S. Photochemistry of light
harvesting pigments and some biochemical changes
under aluminium stress // Pakistan Journal of Botany.
2008. V. 40 (2). P. 779-784.
12. Драгавцев В.А. Эколого-генетический
скрининг генофонда и методы конструирования
сортов сельскохозяйственных культур по урожай-
ности, устойчивости и качеству. Методические ре-
комендации (новые подходы). СПб.: ВИР, 1997. 49 с.
13. Лисицына И.И., Лисицын Е.М. Сравнение
работы генетических систем у боковых и главных сте-
блей зерновых культур // Вестник Российской акаде-
мии сельскохозяйственных наук. 2008. № 3. С. 55-57.
14. Reyna-Llorens I., Corrales I., Poschenrieder
C., Barcelo J., Cruz-Ortega R. Both aluminum and ABA
induce the expression of an ABC-Like transporter gene
(FeALS3) in the tolerant species Fagopyrum esculen-
tum. // Environ Exp Bot. 2014. V. 111. P. 74-82. https://
15. Moriyama U., Tomioka R., Kojima M., Saka-
kibara H., Takenaka C. Aluminum effect on starch, sol-
uble sugar, and phytohormone in roots of Quercus ser-
rata Thunb. Seedlings // Trees. 2016. V. 30. P. 405-413.
doi:10.1007/s00468-015-1252-x.
16. Kopittke P.M. Role of phytohormones in al-
uminium rhizotoxicity // Plant Cell Environ. 2016. V.
39(10). P. 2319-2328. doi: 10.1111/pce.12786.
17. Schwartz S.H., Zeevaart J.A.D. Abscisic acid
biosynthesis and metabolism // Plant hormones: bio-
synthesis, signal transduction and action. Dordrecht:
Springer; 2010. P. 137-155. doi: 10.1007/978-1-4020-
2686-7_7.
Электронная Научная СельскоХозяйственная Библиотека