44 / 52
Ñàäîâîäñòâî è âèíîãðàäàðñòâî, ¹ 2, 2012
42
Áèîòåõíîëîãèÿ
Перспективное направление в получении по-
садочного материала малины – укоренение микро-
побегов длиной до 2 см непосредственно в суб-
страте, минуя стадию укоренения в пробирке. Для
индукции ризогенеза нами применяется ИМК в
концентрации 1 г/л в течение 1 с.
Успех укоренения определяется качеством ис-
ходных микрочеренков. Установлено, что доля
укорененных растений у крупных побегов выше,
чем у мелких. Поэтому между этапами размноже-
ния и укоренения вводится дополнительный этап
элонгации (удлинения побегов). На нем проводят
уменьшение концентрации цитокинина 6-БАП с
1-2 мг/л до 0,2-0,3 мг/л.
Для ускорения ростовых процессов в лабора-
тории проведен эксперимент по влиянию вита-
минно-минерального комплекса «Компливит»
на элитные формы ремонтантной малины.
Полученные результаты позволяют заключить,
что введение в питательную среду МС витамин-
но-минерального комплекса «Компливит» (4 г/л)
приводит к росту коэффициента размножения и
высоты растений. Такой эффект очень важен на
последнем в субкультивировании этапе элонга-
ции для получения более крупных побегов.
Высадка размноженных растений с последу-
ющей адаптацией их к нестерильным условиям
является заключительным и наиболее ответствен-
ным этапом, который определяет значительную
часть успеха размножения растений
in vitro
. В свя-
зи с рядом особенностей пробирочных растений
(слабым функционированием устьичного аппара-
та, отсутствием кутикулярного слоя и корневых
волосков) может наблюдаться значительные поте-
ря высаженного в субстрат материала [11]. Нами
установлено, что на приживаемость растений ма-
лины большое влияние оказывают тип субстрата,
его рН, влажность и температура воздуха.
В своей работе мы практикуем высадку и/или
укоренение пробирочных растений в минипарни-
ках для рассады, состоящих из общего поддона,
кассет и полупрозрачной крышки, обеспечиваю-
щей высокую влажность среды. Кассеты заполня-
ются готовым торфяным субстратом. Ежедневно
проводится опрыскивание растений и полив по
мере необходимости.
После одного-двух месяцев адаптации в ми-
нипарниках, укорененные растения малины с не-
сколькими образовавшимися листочками распи-
кировываются в ящики и помещаются в теплицу,
покрытую нетканым материалом типа «Лутрасил»
для адаптации к естественным условиям. В таком
случае отсутствует парниковый эффект, в тоже
время растения защищены от воздействия низких
температур, что способствует лучшему развитию
растений.
Литература
1.
Высоцкий В.А.
Особенности клонального ми-
кроразмножения некоторых форм ремонтантной ма-
лины // Плодоводство и ягодоводство России: Cб. на-
учных трудов ВСТИСП. – М., 1996. Т.3. – С. 90-95.
2.
Высоцкий В.А.
О генетической стабильности
при клональном микроразмножении плодовых и ягод-
ных культур // Сельскохозяйственная биология, 1995.
№ 5. – С. 57-63.
3.
Казаков И.В., Евдокименко С.Н.
Малина
ремонтантная. ГНУ ВСТИСП. М. 2007. – 288 с.
4.
Нам И.Я., Заякин В.В., Вовк В.В. и др.
Оптимизация метода клонального микроразмножения
для ускоренной селекции межвидовых ремонтант-
ных форм малины // Сельскохозяйственная биология,
1998. – № 3. – С. 51-56.
5.
Туровская Н.И., Стрыгина О.В.
Микро-
клональное размножение малины // Садоводство и
виноградарство, 1990. – № 8. – С. 26-29.
6.
Anderson W.C.
Tissue culture propagation of red
and black raspberry,
Rubus idaeus
and
Rubus occidentalis.
// Acta Horticulture, 1980. – V. 112. – P. 13-20.
7.
Hall H., Hummer K.E., Jaimieson A., and oth-
ers.
Plant Breeding Reviews: Raspberry Breeding and
Genetics. New Jersey: Wiley Blackwell, 2009. – 32. –
P. 39-382.
8.
Jin-Hu Wu, Shirley A. Miller, Harvey K.
Hall and
Pauline A. Mooney //Factors affecting the efficiency of mi-
cropropagation from lateral buds and shoot tips of
Rubus
Plant Cell, Tissue and Organ Culture. – 2009. Vol. 99. –
№ 1, P. 17-25.
9.
Lee E.C.M., Fossard R.A.
Regeneration of straw-
berry plants from tissue cultures // Comb. Proc. (Intern.
Plant Propagators Soc. Miltown, N.-Y.). – 1975. V. 25. –
P. 277-285.
10.
Murashige Т., Skoog F.
A revised medium for
rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures //
Physiologia Plantarum. 1962. – V. 15. – № 13. P. 473-497.
11.
Pierik R.L.M.
In vitro culture of higher plants.
1987. – V. 5. – 344 p.
12.
Reed B.M.
Multipllication of Rubus germplasm
in vitro
a screen of 256 accessions. // J. Amer. Soc. Hort.
Sci, 1990. – V. 44. – № 3. – P. 141-148.
13.
Turk B.A., Swartz H.J., Zimmerman R.H.
Adventitious shoot regeneration in vitro-cultured leaves
of
Rubus
genotypes // Plant Cell. Tiss. Org. Cult, 1994. –
V. 38. – P. 11-17.
14.
Wellander M.
In vitro
culture of red raspber-
ry (
Rubus idaeus
) for mass propagation // Journal of
Horticulture Science, 1985 – V. 60. – P. 493-499.
Электронная Научная СельскоХозяйственная Библиотека