NED373389NED

Вопросы биотехнологии 407 В результате проведенных исследований установлено, что наибольший титр вируса на к/кл и в ИФА был отмечен в исходном материале (5,0 lg и 1:125, соответственно) и в концентрате с ПЭГ (5,75 lg и 1:125, соответственно). Это совпадает с результатами изучения антигенной активности концентратов на кроликах. При введении животным исходного материала титр вируснейтрализу- ющих антител к вирусу ЧП в сыворотке крови был наивысшим и составил 6,83 log 2 после последней иммунизации. Прирост анти- тел к данному вирусу при введении животным концентрата с ПЭГ был сравнительно высоким и составил после последней инокуля- ции антигена в среднем 6,2 log 2. Нужно отметить, что, несмотря на двукратное центрифугиро- вание вируссодержащей суспензии, значительное количество виру- са остается в клеточном детрите. Видимо, это связано с тем, что вирусные частицы ассоциированы с мембраной клеточной стенки. Это свидетельствует о необходимости изыскания более совершен- ных методов отделения вируса ЧП от клеток для получения высо- коспецифичного материала, пригодного для использования в со- временных иммунохимических реакциях. Как видно из таблицы, очистка концентратов вируса ЧП с по- мощью хлороформа и ПЭИ приводила к значительной потере ви- русного материала. В результате проведенных исследований уста- новлено, что титр инфекционности вируса после очистки этими препаратами уменьшался в 50 и 20 раз, соответственно, по сравне- нию с неочищенным концентратом ПЭГ (с 5,75 lg до 1,0 lg и 3,5 lg, соответственно). Это может свидетельствовать о неустойчивости вируса ЧП к хлороформу и ПЭИ, что следует учитывать при даль- нейшей работе с данным вирусом, и о необходимости поиска более подходящих методов очистки вируса ЧП. Выводы Таким образом, проведенные исследования показали, что кон- центрирование вируса ЧП с использованием ПЭГ не обеспечивает повышение биологической активности, а очистка хлороформом и ПЭИ ведет к ее снижению. Электронная Научная СельскоХозяйственная Библиотека