NED373389NED

406 Вопросы биотехнологии Очищали суспензию в первом случае внесением 1/10 объема хло- роформа, во втором - 1/10 объема 10% раствора ПЭИ с последующим центрифугированием суспензий при 1000 об/мин в течение 15 мин. Вируссодержащую надосадочную жидкость использовали в опытах. Инфекционную активность полученных препаратов определя- ли путем их титрования на культуре клеток Vero и в прямом твердо- фазном варианте ИФА с использованием набора фирмы «Нарвак». Антигенную активность очищенных и концентрированных препаратов изучали на кроликах. Были сформированы 7 групп жи- вотных. Каждая опытная группа включала 3 головы. Инокуляцию антигенов проводили внутримышечно с внутренней поверхности бедра трехкратно с интервалом в 10 дней. Контрольным животным вводили плацебо. Отбор проб крови для получения иммунных сы- вороток производили перед каждой иммунизацией и через 21 день после третьего введения антигенов. Результаты и обсуждение Результаты исследования биологической активности концен- тратов вируса ЧП представлены в таблице. Таблица Биологическая активность концентратов вируса ЧП Препарат Активность концентратов инфекционная антигенная на к/кл Vero (lg) в ИФА на кроликах (log 2 ) до имм. после 1-й имм. после 2-й имм. после 3-й имм. Исходный материал 5,0 1:125 <1,0 3,2±0,56 5,5±0,50 6,83±0,76 Клеточный детрит 4,75 1:125 <1,0 3,46±0,63 6,25±0,27 6,75±0,70 ПЭГ 5,75 1:125 <1,0 3,5±0,50 6,38±0,36 6,2±0,43 ПЭГ+Хлороформ <1,0 1:5 <1,0 <3,0 <3,0 3,83±0,76 ПЭГ+ПЭИ 3,50 1:25 <1,0 3,5±0,50 3,5±0,50 3,1±0,23 К/кл Vero <1,0 - <1,0 <1,0 <1,0 <1,0 Контроль (плацебо) - - <1,0 <1,0 <1,0 <1,0 «-» - не исследовали Электронная Научная Сельск Хозяйственная Библиотека