Table of Contents Table of Contents
Previous Page  77 / 96 Next Page
Information
Show Menu
Previous Page 77 / 96 Next Page
Page Background

75

ПИЩЕВАЯ ПРОМЫШЛЕННОСТЬ

5/2011

12345

12345

12345

12345

12345

PACKAGING AND LOGISTICS

Образцы почв были взяты из раз'

личных регионов России: Красно'

дарский край (образец № 1), Самар'

ская область (образец № 2), Туль'

ская область (образец № 3), Мос'

ковская область (образец № 4). Осо'

бое внимание обращали на исследо'

вание образцов почв Московской

области, взятых со свалок (технозе'

мы). В работе использовали образ'

цы техноземов с нерегулируемой

(образцы №№ 5 и 6) и регулируе'

мой (образец № 7) свалок.

Получение и выделение чистых

культур проводили путем создания

элективных условий по общеприня'

той методике [6]. Микроскопические

грибы идентифицировали по культу'

рально'морфологическим призна'

кам с использованием определите'

лей почвенных грибов [7, 8].

Культивирование микроорганиз'

мов на полимерах и ПКМ проводи'

ли на основании ГОСТ 9.048–89,

ГОСТ 9.040–91. Оценивали грибос'

тойкость каждого образца по ин'

тенсивности развития мицелия

(табл. 2).

Продукты деструкции выявляли

при помощи хроматографа марки

Hewlett Packard модель HP – 6890

(США). Для идентификации хрома'

тограмм использовали базу данных

NIST 98 и WILEY275. Газохроматогра'

фическое разделение примесей осу'

ществляли на капиллярной кварце'

вой колонке НР'5 МС с геометричес'

кими размерами 30 м х 0,25 мм х

х 0,25 мкм. Образцы пленок до и

после обработки растворителями су'

шили на фильтровальной бумаге

при комнатной температуре и взве'

шивали на аналитических весах.

Пленки помещали в бюксы, залива'

ли 2 мл метанола, встряхивали вруч'

ную в течение 5 мин и ставили в УЗВ

на 15 мин, после чего отбирали ра'

створитель и концентрировали его

до объема 0,2 мл, обдувая поверх'

ность жидкости потоком азота, затем

1 мкл «рабочего» образца вводили в

испаритель хроматографа. Образцы

пленок, не бывших в контакте с мик'

роорганизмами, обрабатывали вы'

шеприведенным способом и исполь'

зовали как «контрольные» образцы.

Сравнивали хроматограммы в слу'

чаях контакта полимера с микроор'

ганизмами с хроматограммами кон'

трольных образцов, исключая пики с

одинаковыми временами удержива'

ния (метод вычитания). Оставшиеся

пики на хроматограммах идентифи'

цировали.

В исследованных почвах были об'

наружены следующие виды микро'

мицетов:

в почве Краснодарского края (поч'

ва № 1) преобладают

Aspergillus

ochraceus

G. Wilh.,

A. sydowii

(Bainier

et Sartory) Thom et Church,

A. versicolor

(Vuill.) Tirab.,

Penicillium

aurantiogriseum

Dierckx,

P. chrysogenum

Thom,

P. citrinum

Thom;

в почве Самарской области (почва

№ 2) наиболее обильно были пред'

ставлены

Acrostalagmus luteoalbus

(Link) Zare,

Aspergillus sydowii

,

Fusarium

solani

(Mart.) Sacc.,

Penicillium

aurantiogriseum

,

P.

citrinum

W. Gams et Schroers;

почва Тульской области (почва

№ 3) характеризовалась преоблада'

нием следующих культур:

Aspergillus

niger

Tiegh.,

A. sydowii

,

A. versicolor

,

Penicillium

aurantiogriseum

,

P.

chrysogenum

,

P. citrinum

;

в почве Московской области (поч'

ва № 4) наиболее обильны были:

Aspergillus

ochraccus

,

А. glaucus

(L.)

Link,

A.

sydowii

,

Penicillium

chrysogenum

,

P. citrinum

;

технозем № 1 (почва № 5) с нере'

гулируемой свалки (песок) отлича'

ется наличием таких микроорганиз'

мов, как

Aspergillus sydowii

,

A.

terreus

Thom;

Penicillium

chrysogenum

;

технозем № 2 (почва № 6) –

Aspergillus glaucus

,

А. sydowii

,

A.

ustus

(Bainier) Thom et Church,

Mucor

circinelloides

Tiegh,

Penicillium

canescens

Sopp,

Talaromyces helicus

(Raper et Fennell) C.R. Benj.,

Trichoderma harzianum

Rifai;

технозем № 3 (почва № 7) с регу'

лируемой свалки оказался более бо'

гатым видами технофильных гри'

бов –

Acremonium kiliense

Gr

ü

tz,

Acrostalagmus luteoalbus

,

Actino'

mucor elegans

(Eidam) C.R. Benj. et

Hesselt.,

Aspergillus glaucus

,

A. niger

,

A. sydowii

,

A. versicolor

,

Aureo'

basidium pullulans

(de Bary) G.

Процесс биодеструкции

высокомолекулярных материалов

определяется поверхностным

биоповреждением за счет

деструкции как основной цепи

и боковых групп, так и добавок,

вводимых в полимер.

Таблица 3

Грибостойкость ПЭВД (ГОСТ 9.048–89, ГОСТ 9.040–91)

аремилопакраМ

вомзинагрооркимдиВ

яитивзарьтсонвиснетнИ

йенд,яилецим

7

41

12

82

300'30351ДВЭП

snagelerocumonitcA

4 4 4 4

020'30851ДВЭП

snagelerocumonitcA

4 4 5

5

020'30801ДВЭП

snagelerocumonitcA

5 5 5

5

300'30351ДВЭП

rolocisrevsulligrepsA

3 4 4 4

020'30851ДВЭП

rolocisrevsulligrepsA

4 4 5

5

020'30801ДВЭП

rolocisrevsulligrepsA

5 5 5

5

300'30351ДВЭП

iiwodyssulligrepsA

4 4 4

020'30851ДВЭП

iiwodyssulligrepsA

4 4 4 4

020'30801ДВЭП

iiwodyssulligrepsA

4 4 4 4

300'30351ДВЭП

snalullupmuidisaboeruA

3 4 4 4

020'30851ДВЭП

snalullupmuidisaboeruA

4 4 4 4

020'30801ДВЭП

snalullupmuidisaboeruA

4 5 5

5

300'30351ДВЭП

muesirgoitnaruamuillicineP

2 3 4 4

020'30851ДВЭП

muesirgoitnaruamuillicineP

2 2

3

3

020'30801ДВЭП

muesirgoitnaruamuillicineP

3 4 4 5

300'30351ДВЭП

munaizrahamredohcirT

2 4 4 4

020'30851ДВЭП

munaizrahamredohcirT

2 3 4 4

020'30801ДВЭП

munaizrahamredohcirT

4 4 5

5

Электронная Научная СельскоХозяйственная Библиотека